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学习凋亡试剂盒的检测步骤点击次数：1378 更新时间：2015-12-21

     实验方法
    该实验采用的是经过优化的喜树碱诱导Jurkat细胞系凋亡实验条件。其他类型的细胞需做相应调整。
    该试剂盒在传统及Attune?声波聚焦流式细胞仪上验证过，使用Attune?声波聚焦流式细胞仪时，各种流速（25 μL/min 到 1,000 μL/min）都可以。
    1.用有效方法诱导凋亡；设一不加诱导的阴性对照。
    2.孵育之后收集细胞并用冷的PBS洗涤。
    3.制备1×annexin V 结合缓冲液：按10次分析的量计算，加1 mL试剂C到4ml的去离子水中。
    4.制备100μg/mL的PI工作液：用45μl 1×annexin V 结合缓冲液稀释5μl试剂B，剩余可保存备用。
    5.再次离心步骤2中收集的细胞，弃去上清，重悬在1×annexinV 结合缓冲液。计数并用上述缓冲液稀释至约1 × 106 cells/mL。按每次实验用量100μl准备充分。
    6.在每100μl细胞悬液中加入5μl试剂A和1μl步骤4制备的PI工作液。
    7. 室温孵育15min。
    8. 孵育结束，加400μl 1×annexin V 结合缓冲液，轻轻混匀后置于冰上。
    9.尽快对染色细胞进行分析。可用FL1检测530nm激发光，FL3检测>575nm的激发光。细胞群将被分为三组：活细胞显示弱荧光，凋亡细胞显示绿色荧光，而死细胞则同时发红、绿荧光。
    10. 可用荧光显微镜验证结果，适用检测FITC、TRITC或Texas Red?的滤光片检测。
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